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Méthode de détection rapide de Brettanomyces par PCR quantitative
en temps réel Philippe Humbert La
PCR (Polymerase reaction chain) est une méthode qui nait en 1983 aux Etats
Unis pour l’étude du génome. Depuis,
cette méthode s’est largement répandue dans d’autres domaines comme le judiciaire
avec le développement des tests ADN, mais aussi en microbiologie pour
l’identification de micro organismes et leur quantification. Cette
méthode trouve une application directe en œnologie car elle détecte, spécifiquement
et en temps réel, des levures de contamination appelées Brettanomyces
Bruxellensis, qui sont responsables de la formation de phénols
volatils (odeurs animales, giboyeuses, sueur de cheval, etc.). Ces
phénols volatils sont des déviations aromatiques irrémédiables pour un vin c’est
pourquoi il est impératif de contrôler les populations de Brettanomyces qui
pourrait s’y être développées. La
PCR quantitative est l’outil le mieux adapté pour cela car en connaissant la
charge en Brettanomyces d’un vin on peut limiter leur développement par des
traitements appropriés. De
plus, la surveillance ainsi mise en place induira immanquablement, un
changement d’habitudes et de pratiques tout au long de l’élaboration des vins.
- Rapidité :
quantification de la charge en Brettanomyces d’un échantillon en 3heures. - Spécificité :
détection de l’ADN de Brettanomyces, sans interférence possible avec un autre
ADN microbien. - Sensibilité :
à partir de 10 cellules par ml de vin
testé. L’ADN
L’ADN,
découvert par James Watson & Francis Crick en 1953 (Prix Nobel en 1962) est
retrouvé dans les chromosomes de toutes les cellules vivantes. Il renferme
l'ensemble des informations nécessaires au développement et au fonctionnement
d'un organisme et porte l'information génétique, constituant le génome des
êtres vivants. Il est donc spécifique de
chaque espèce vivante. La PCR
comment ça marche ?
Une fois cet ADN récupéré, il sera dénaturé à la
chaleur ce qui provoquera l’ouverture de la double hélice et la séparation des
deux brins. C’est l’étape de Dénaturation
qui se réalise à 94°C Ces
deux brins séparés sont mis en présence de nucléotides, d’amorces de la
réaction de PCR et d’une sonde fluorescente qui sous l’effet d’une enzyme
spécifique, la Polymérase, aboutira à la reconstitution de l’ADN à partir des 2
brins originaux. C’est la deuxième étape l’Hybridation suivi de la troisième l’Élongation. On
obtient ainsi à la fin 2 molécules d’ADN, copies conformes de la molécule
d’origine et marquées par une fluorescence C’est le premier cycle.
Au deuxième cycle : 4 molécules
d’ADN Au troisième cycle : 8
molécules d’ADN Au
quatrième cycle : 16 molécules d’ADN, etc.
Après
de nombreux cycles, la quantité d’ADN fluorescent est suffisamment importante
pour être détectée et quantifiée. L’appareil
permet la détection et la quantification de la fluorescence découlant sur
la quantification de la charge en Brettanomyces. En simplifiant, la PCR
quantitative consiste à faire des photocopies fluorescentes de l’ADN des
Brettanomyces présentes dans le vin analysé. Au
laboratoire de Grézillac 4 techniciens
formés à la PCR réalisent cette analyse. La première étape consiste à extraire
l’ADN des Brettanomyces présentes dans les vins à tester (cela dure environ 30
à 45mn), suit l’étape de préparation de la réaction de PCR (environ 20mn) et
enfin l’étape de réaction dans le thermocycleur (environ 1h 30). Un
logiciel d’analyse associé au thermocycleur calcule automatiquement les
quantités de brettanomyces dans les vins testés avec un seuil de détection
allant jusqu’à 10 cellules par ml de vin testé. Le mode opératoire mis en place est caractérisé par :
- L’utilisation d’un témoin négatif à
chaque série.
- L’utilisation d’un témoin de charge
connue à chaque série.
- L’utilisation
d’un marqueur pour
chaque échantillon afin de détecter la
présence
d'inhibiteurs de la
PCR et écarter les faux négatifs (Système de
contrôle interne
positif = PCR
artificielle détectée dans le même tube que la PCR
Brettanomyces). |
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